Práticas de Microbiologia (2ª edição)
Seção 2 | Prática
De uma forma geral, a pressão seletiva é um fenômeno que promove o surgimento de clones altamente resistentes de determinada cepa bacteriana a determinado antibiótico, fazendo com que, por seleção natural, somente as cepas resistentes sobrevivam, ou seja, as cepas suscetíveis a determinados antibióticos desaparecem, restando apenas aquelas capazes de sobreviver na presença destes, invalidando, assim, qualquer tipo de antibioticoterapia sobre tal bactéria resistente. Dessa forma, a administração de antibióticos ou antimicrobianos deve obedecer a critérios rígidos (muitas vezes promovidos e regularizados por comissões de saúde pública) para que seu uso indiscriminado não gere uma pressão seletiva.
SEÇÃO 2 | PRÁTICA
Antibiograma pelo método de Kirby-Bauer
Objetivo
Verificar a ação de substâncias antimicrobianas no crescimento de bactérias, usando o método de Kirby-Bauer.
O teste para verificação da sensibilidade a antibióticos é utilizado para determinar a suscetibilidade de uma bactéria diante de vários antibióticos. Esse método padronizado é tipicamente utilizado para medir a eficácia de uma variedade de antibióticos sobre uma espécie de microrganismo, com a finalidade de fornecer orientação para a prescrição, na prática médica, da maioria dos antibióticos usados na terapia das infecções bacterianas. O método mais amplamente utilizado é o método de Kirby-Bauer, aceito como o método-padrão para a realização dos antibiogramas.
Material (ver Figura 7.3)
■ Placas de Petri contendo ágar Mueller-Hinton ■ Antibióticos impregnados em discos de papel-filtro ■ Estufa a 37°C
■ Cultura de bactérias em caldo simples: escolha livre. Pode ser usada uma cultura de
bactérias geralmente resistentes, como Pseudomonas spp., e outra mais facilmente
disponível no laboratório, como Escherichia coli ■ Bico de Bunsen
■ Pinças estéreis
■ Réguas
■ Swabs estéreis
Figura 7.3 Material utilizado para a realização do antibiograma (método de Kirby-Bauer). Isolado em meio líquido (A); pinça estéril para colocação dos discos impregnados com os antibióticos (B); placa de Petri com o meio ágar Mueller-Hinton (C); swab de algodão estéril (D).
Procedimentos
1. Umedecer, em condições assépticas, um swab no tubo com a cultura da bactéria-teste
(Figura 7.4) e semear toda a superfície da placa de Petri, visando obter um crescimento
confluente (Figura 7.5).
2. Após a semeadura, os discos são colocados sobre a superfície do ágar inoculado e
levemente pressionados com auxílio de uma pinça ou bastão estéril de modo que
fiquem equidistantes na superfície do meio (Figura 7.6).
Figura 7.4 Impregnação do swab de algodão com o meio de cultura líquido crescido com o microrganismo isolado.
Figura 7.5 Semeadura no ágar Mueller-Hinton. A semeadura é feita passando-se levemente o swab umedecido sobre toda a superfície do meio de cultura.
Figura 7.6 Deposição dos discos de antibióticos. Após a seleção dos antibióticos a serem testados no antibiograma, estes são depositados na superfície do meio de cultura, de forma espaçada, com auxílio de uma pinça estéril.
Figura 7.7 Visualização da placa do teste de antibiograma. Após o período de incubação, os halos de inibição (região clara ao redor dos discos) devem ter seus raios medidos em milímetros com auxílio de uma régua comum ou de um paquímetro.
Os discos de antibióticos usados para este teste também são padronizados para conter
uma quantidade específica de antibióticos, que, na maioria das vezes, está marcada na
superfície deles, conforme especificações do fabricante. 3. Incubar as placas a 37°C, pelo mínimo de 18 horas e máximo de 48 horas.
Interpretação dos resultados
1. Observar a placa do antibiograma, verificando a presença ou a ausência de halos de
inibição do crescimento em torno dos discos de antibióticos. 2. A zona clara de inibição (raio do halo de inibição) ao redor de cada disco é medida em
milímetros (Figura 7.7), com o auxílio de régua, e a medida é comparada com uma
tabela-padrão de interpretação (Quadros 7.2 a 7.5).
Normalmente, as zonas no ágar serão bem distintas e os halos bem separados ao redor de cada disco de antibiótico. Ocasionalmente, duas zonas poderão aparecer juntas, produzindo uma superposição de halos, formando o que se pode denominar “halos geminados”. Esse fenômeno deve-se ao que chamamos de “efeito sinérgico” de dois antibióticos. Em outras palavras, esta é uma área em que a concentração de cada antibiótico é muito baixa para ser efetiva por antibiótico isoladamente, mas, em combinação com o outro antibiótico, passa a ter força suficiente para eliminar a bactéria que está sendo testada.
Devemos ter atenção na leitura dos resultados do antibiograma, com relação a organismos móveis, tais como os do gênero Proteus, conhecidos como invasores, quando se desenvolvem na superfície do ágar, produzindo um fino véu que pode penetrar as zonas de inibição ao redor dos discos. É preciso ignorar essa zona de “invasão” quando for realizada a leitura, de forma que deve ser medida somente a borda externa do halo, a qual deve estar claramente definida.
Outro resultado que podemos considerar atípico consiste na presença de colônias bem definidas dentro da zona de inibição. Isso não seria uma “invasão” propriamente dita, mas a presença de colônias mutantes resistentes, diferentes da maior parte das colônias da cepa em estudo, ou então o cultivo não estaria puro e as colônias em questão seriam de uma espécie totalmente diferente. Para solucionar esse problema, pode ser necessária uma coloração de Gram e/ou um subcultivo dessas colônias para obtermos uma resposta definitiva.
Quadro 7.2 Padrões interpretativos do diâmetro da zona (halo) de inibição para enterobactérias.
Diâmetro do halo (mm)
Agente Conteúdo
antimicrobiano (disco) Resistente Intermediário Sensível Comentários
Penicilinas
Ampicilina 10 μg ≤ 13 14-16 ≥ 17 (1) Classe representativa para
ampicilina e amoxicilina.
Mezlocilina ou 75 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21
Piperacilina 100 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21
Ticarcilina 75 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20
Carbenicilina 100 μg ≤ 19 20-22 ≥ 23
Mecilinam 10 μg ≤ 11 12-14 ≥ 15 (2) Somente para uso contra E.
coli isolada do sistema urinário.
Combinação de betalactâmicos/inibidores da betalactamase
Amoxicilina-ácido 20/10 μg ≤ 13 14-17 ≥ 18
clavulânico ou
10/10 μg ≤ 11 12-14 ≥ 15
Ampicilina-
sulbactam
Piperacilina- 100/10 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21
tazobactam
Ticarcilina-ácido 75/10 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20
clavulânico
Cefamicinas (parenteral) (incluindo cefalosporinas de I, II, III e IV gerações)
(3) Cuidado: Para Salmonella
spp. e Shigella spp., as
cefalosporinas de primeira e
segunda gerações podem
parecer ativas in vitro mas
não são efetivas clinicamente
e, sendo assim, não deverão
ser relatadas como
suscetíveis.
(4) Cepas de Klebsiella spp. e E.
coli que produzem um largo espectro de betalactamases
podem ser resistentes
clinicamente à terapia com
penicilinas, cefalosporinas ou
aztreonam, mesmo sendo
aparentemente sensíveis in vitro a alguns desses agentes.
(5) Enterobacter, Citrobacter e
Serratia podem desenvolver resistência durante terapia
prolongada com
cefalosporinas de terceira
geração.
Cefazolina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefalotina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefamandol ou 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefuroxima sódica 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
(parenteral)
Cefepima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefmetazol 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Cefoperazona 75 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Cefotetana 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Cefoxitina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefotaxima ou 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23 (6) Cefotaxima e ceftriaxona
deverão ser testadas e
Ceftizoxima ou 30 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20
relatadas em isolados de
Ceftriaxona 30 μg ≤ 13 14-20 ≥ 21 líquido cerebrospinal no
lugar de cefalotina e
cefazolina.
Ceftazidima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 Veja comentário (4).
Latamoxefe 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
Cefamicinas (oral)
Acetilcefuroxima 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
(oral)
Loracarbefe 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 (7) Em razão de ter sido relatado
que certas cepas de
Citrobacter, Providencia e Enterobacter spp. tenham revelado falsa suscetibilidade
com discos de cefdinir e
loracarbefe, cepas desses
gêneros não deverão ser
testadas e relacionadas com
esses discos.
Cefaclor 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefdinir 5 μg ≤ 16 17-19 ≥ 20 Veja comentário (7)
Ce xima 5 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19 (8) Não aplicável para testes
com Morganella spp.
Cefpodoxima 10 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21 Veja comentários (4) e (8).
Cefprozila 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 (9) Como foi relatado que certas
cepas de Providencia spp. revelaram falsa
suscetibilidade com discos de
cefprozila, cepas desse
gênero não deverão ser
testadas ou relacionadas com
esse disco.
Cefetamete 10 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 Veja comentário (8).
Ceftibuteno 30 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21 (10) Indicado somente para
isolados de urina.
Carbapenêmicos
Ertapeném 10 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
Imipeném ou 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16
Meropeném 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16
Monobactâmicos
Aztreonam 30 μg ≤ 15 16-21 ≥ 22
Aminoglicosídeos
Gentamicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Amicacina 30 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Canamicina 30 μg ≤ 13 14-17 ≥ 18
Netilmicina 30 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Tobramicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Estreptomicina 10 μg ≤ 11 12-14 ≥ 15
Tetraciclinas
Tetraciclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 16 (11) Organismos suscetíveis à
tetraciclina são também
considerados suscetíveis a
doxiciclina e minociclina.
Entretanto, alguns
organismos intermediários
ou resistentes à tetraciclina
podem ser suscetíveis a
doxiciclina ou minociclina ou
a ambas.
Doxiciclina 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Minociclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 16
Fluoroquinolonas (12) Cepas de Salmonella
suscetíveis a uoroquinolona
e que são resistentes ao ácido
nalidíxico podem estar
associadas à falha clínica ou a
uma resposta tardia em
pacientes com salmoneloses
extraintestinais tratados com
uoroquinolona.
Cipro oxacino ou 5 μg ≤ 15 16-20 ≥ 4
Levo oxacino 5 μg ≤ 13 14-16 ≥ 8
Gati oxacino 5 μg ≤ 14 15-17 ≥ 8
Gemi oxacino 5 μg ≤ 15 16-19 ≥ 1 (13) Aprovado para Klebsiella
pneumoniae.
Lome oxacino ou 10 μg ≤ 18 19-21 ≥ 8
Nor oxacino ou 10 μg ≤ 12 13-16 ≥ 16
O oxacino 5 μg ≤ 12 13-15 ≥ 8
Enoxacino 10 μg ≤ 14 15-17 ≥ 8
Grepa oxacino 5 μg ≤ 14 15-17 ≥ 4
Fleroxacino 5 μg ≤ 15 16-18 ≥ 8
Quinolonas
Cinoxacino 100 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19
Ácido nalidíxico 30 μg ≤ 13 14-18 ≥ 19 Veja comentário (10).
(14) Em adição ao teste de
isolados de urina, o ácido
nalidíxico pode ser usado
para o teste de
suscetibilidade reduzida a
uoroquinolonas em isolados
de pacientes com infecção
extraintestinal por
Salmonella (12).
Inibidores da via do folato
Sulfametoxazol- 1,25/23,75 ≤ 10 11-15 ≥ 16
trimetoprima μg
Sulfonamidas 250 ou 300 ≤ 12 13-16 ≥ 17 (15) O disco de sul soxazol
μg pode ser usado como
representante de qualquer
preparação de sulfonamida
correntemente disponível.
Trimetoprima 5 μg ≤ 10 11-15 ≥ 16
Fenicóis
Cloranfenicol 30 μg ≤ 12 13-17 ≥ 18 (16) Não relatado em isolados
do sistema urinário.
Nitrofurantoínas
Nitrofurantoína 300 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Fosfomicinas
Fosfomicina 200 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Condições do teste: meio, ágar Mueller-Hinton; inóculo, método de espalhamento em placa ou suspensão direta da
colônia equivalente a 0,5 do padrão de MacFarland; incubação: 35°C (± 2°C), ar ambiente, por 16 a 18 h. Fonte:
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), ISO 20776-1:2006.
Quadro 7.3 Padrões interpretativos do diâmetro da zona (halo) de inibição para Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp., Stenotrophomonas maltophilia e Burkholderia cepacia.
Diâmetro do halo (mm)
Agente Conteúdo
antimicrobiano (disco) Resistente Intermediário Sensível Comentários
Penicilinas
Mezlocilina 75 μg ≤ 15 – ≥ 16 Para P. aeruginosa.
Ticarcilina 75 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21 Para Acinetobacter spp.
Piperacilina 100 μg ≤ 14 – ≥ 15 Para P. aeruginosa.
≤ 14 15-19 ≥ 20 Para Acinetobacter spp.
≤ 17 – ≥ 18 Para P. aeruginosa.
≤ 17 18-20 ≥ 21 Para Acinetobacter spp.
Carbenicilina 100 μg ≤ 13 14-16 ≥ 17 Para P. aeruginosa.
≤ 19 20-22 ≥ 23 Para Acinetobacter spp.
Azlocilina 75 μg ≤ 17 – ≥ 18 Para P. aeruginosa.
Combinação de betalactâmicos/inibidores da betalactamase
Ampicilina- 10/10 μg ≤ 11 12-14 ≥ 15 (1) Deve ser testado para
sulbactam Acinetobacter spp. resistentes
a outros agentes.
Piperacilina- 100/10 μg ≤ 17 – ≥ 18 Para P. aeruginosa.
tazobactam
100/10 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21 Para Acinetobacter spp.
Ticarcilina-ácido 75/10 μg ≤ 14 – ≥ 15 Para P. aeruginosa.
clavulânico 75/10 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20 Para Acinetobacter spp.
Cefamicinas (parenteral) (incluindo cefalosporinas de I, II, III e IV gerações)
Ceftazidima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 Para B. cepacia.
≤ 17 18-20 ≥ 21
Cefepima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefoperazona 75 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Cefmetazol 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Cefoperazona 75 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Cefotetana 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Cefoxitina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefotaxima 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
Ceftizoxima 30 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20
Latamoxefe 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
Carbapenêmicos
Imipeném 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16
Meropeném 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16 Para B. cepacia.
10 μg ≤ 15 16-19 ≥ 20
Monobactâmicos
Aztreonam 30 μg ≤ 15 16-21 ≥ 22
Aminoglicosídeos
Gentamicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Amicacina 30 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Tobramicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Netilmicina 30 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Tetraciclinas
Tetraciclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 16 (2) Organismos suscetíveis à
tetraciclina são também
considerados suscetíveis a
doxiciclina e minociclina.
Entretanto, alguns
organismos intermediários
ou resistentes à tetraciclina
podem ser suscetíveis a
doxiciclina ou minociclina ou
ambas.
Doxiciclina 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Minociclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 16
Fluoroquinolonas
Cipro oxacino 5 μg ≤ 15 16-20 ≥ 4
Levo oxacino 5 μg ≤ 13 14-16 ≥ 17
Lome oxacino ou 10 μg ≤ 18 19-21 ≥ 22
Nor oxacino ou 10 μg ≤ 12 13-16 ≥ 17
O oxacino 5 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Gati oxacino 5 μg ≤ 14 15 a 17 ≥ 18 (3) Este, em particular, aplica-se
somente a isolados do
sistema urinário.
Fenicóis
Cloranfenicol 30 μg ≤ 12 13-17 ≥ 18 (4) Não utilizado rotineiramente
em isolados do sistema
urinário.
Inibidores da via do folato
Sulfametoxazol- 1,25/23,75 ≤ 10 11-15 ≥ 16
trimetoprima μg
Sulfonamidas 250 ou 300 ≤ 12 13-16 ≥ 17 (5) O disco de sul soxazol pode
μg ser usado como
representante de qualquer
preparação de sulfonamida
correntemente disponível.
Condições do teste: meio, ágar Mueller-Hinton; inóculo, método de espalhamento em placa ou suspensão direta da
colônia equivalente a 0,5 do padrão de MacFarland; incubação: 35°C (± 2°C); ar ambiente; por 16 a 18 h, ou 20 a 24 h
para Stenotrophomonas maltophilia e Burkholderia cepacia. Fonte: Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), ISO 20776-1:2006.
Quadro 7.4 Padrões interpretativos do diâmetro da zona (halo) de inibição para Staphylococcus spp.
Diâmetro do halo (mm)
Agente Conteúdo
antimicrobiano (disco) Resistente Intermediário Sensível Comentários
Penicilinas (1) Esta lococos suscetíveis à
penicilina são também
suscetíveis a outras penicilinas,
combinação de inibidores
betalactâmicos/betalactamase,
CEPHAMS e carbapenêmicos
aprovados para o uso pela FDA
para infecções esta locócicas.
Penicilina 10 unidades ≤ 28 – ≥ 29 (2) Cepas de Staphylococcus
aureus penicilinorresistentes e
suscetíveis à oxacilina
produzem betalactamase; por
isso, é preferido o teste do disco
de penicilina de 10 unidades ao
disco de ampicilina. A
penicilina deve ser usada para
testar a suscetibilidade de
todas as penicilinas
betalactamase instáveis, como
ampicilina, amoxicilina,
azlocilina, carbenicilina,
mezlocilina, piperacilina e
ticarcilina.
Oxacilina 30 μg ≤ 19 – ≥ 20 Para S. aureus e S. lugdunensis.
cefoxitina
≤ 10 11-12 ≥ 13 Para S. aureus e S. lugdunensis.
1 μg oxacilina
≤ 24 – ≥ 25 Para esta lococos coagulase-
30 μg negativos exceto S.
≤ 17 – ≥ 18
cefoxitina lugdunensis.
1 μg oxacilina Para esta lococos coagulase-
negativos exceto S. lugdunensis.
Ampicilina 10 μg ≤ 28 – ≥ 29 (3) Classe representativa para
ampicilina e amoxicilina.
(4) Para esta lococos
oxacilinorresistentes, relatar
como resistentes ou não
relatar.
Meticilina 5 μg ≤ 9 10-13 ≥ 14 (5) Os valores limites dos discos de
difusão são para uso apenas
com S. aureus.
Nafcilina 1 μg ≤ 10 10-12 ≥ 13 (6) Os valores limites dos discos de
difusão são para uso apenas
com S. aureus.
Combinação de betalactâmicos/inibidores da betalactamase
Amoxicilina-ácido 20/10 μg ≤ 19 – ≥ 20 (7) Para esta lococos
clavulânico oxacilinorresistentes, relatar
como resistentes ou não
relatar.
Ampicilina- 10/10 μg ≤ 11 12-14 ≥ 15
sulbactam
Piperacilina- 100/10 μg ≤ 17 – ≥ 18
tazobactam
Ticarcilina-ácido 75/10 mg ≤ 22 – ≥ 23
clavulânico
Cefamicinas (parenteral) (incluindo cefalosporinas de I, II, III e IV (8) Para esta lococos
gerações) oxacilinorresistentes, relatar
como resistentes ou não
relatar.
Cefamandol 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefazolina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefepima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefmetazol 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Cefonicida 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefoperazona 75 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Cefotaxima 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
Cefotetana 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Ceftazidima 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Ceftizoxima 30 μg ≤ 14 15-19 ≥ 20
Ceftriaxona 30 μg ≤ 13 14-20 ≥ 21
Cefuroxima sódica 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefalotina 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Latamoxefe 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
Cefamicinas (oral) (9) Para esta lococos
oxacilinorresistentes, relatar
como resistentes ou não
relatar.
Cefaclor 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Cefdinir 5 μg ≤ 16 17-19 ≥ 20
Cefpodoxima 10 μg ≤ 17 18-20 ≥ 21
Cefprozila 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Axetilcefuroxima 30 μg ≤ 14 15-22 ≥ 23
(oral)
Loracarbefe 30 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Carbapenêmicos (10) Para esta lococos
oxacilinorresistentes, relatar
como resistentes ou não
relatar.
Ertapeném 10 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
Imipeném 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16
Meropeném 10 μg ≤ 13 14-15 ≥ 16
Glicopeptídeos
Vancomicina 30 μg – – ≥ 15 (11) Todos os isolados
esta locócicos para os quais a
zona de diâmetro para a
vancomicina é de 14 mm ou
menos deverão ser testados
pelo método CIM. O
procedimento de difusão por
disco não diferenciará cepas
com susceptibilidade reduzida
à vancomicina (CIM 4,8
mg/mℓ) de cepas sensíveis (CIM variando de 0,5-2
mg/mℓ), mesmo quando incubadas por 24 h.
Teicoplanina 30 μg ≤ 10 11-13 ≥ 14
(intravenosa)
Lipopeptídeos
Daptomicina 30 μg – – ≥ 16
Aminoglicosídeos
Gentamicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Amicacina 30 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Canamicina 30 μg ≤ 13 14-17 ≥ 18
Netilmicina 30 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Tobramicina 10 μg ≤ 12 13-14 ≥ 15
Macrolídeos
Azitromicina ou 15μg ≤ 13 14-17 ≥ 18 (12) Não utilizados
rotineiramente para isolados
Claritromicina ou 15 μg ≤ 13 14-17 ≥ 18
do sistema urinário.
Eritromicina 15 μg ≤ 13 14-22 ≥ 23
Diritromicina 15 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
Cetolídeos
Telitromicina 15 μg ≤ 18 19-21 ≥ 22
Tetraciclinas
Tetraciclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19 (13) Organismos suscetíveis à
tetraciclina são também
considerados suscetíveis a
doxiciclina e minociclina.
Entretanto, alguns organismos
intermediários ou resistentes à
tetraciclina podem ser
suscetíveis a doxiciclina ou
minociclina ou ambas.
Doxiciclina 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Minociclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19
Fluoroquinolonas (14) Staphylococcus spp. podem
desenvolver resistência durante
terapias prolongadas com
quinolonas. Por isso, isolados
inicialmente suscetíveis podem
tornar-se resistentes 3 a 4 dias
após o início da terapia.
Cipro oxacino ou 5 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Levo oxacino ou 5 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
O oxacino ou 5 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Gati oxacino ou 5 μg ≤ 19 20-22 ≥ 23
Moxi oxacino 5 μg ≤ 20 21-23 ≥ 24
Lome oxacino ou 10 μg ≤ 18 19-21 ≥ 22
Nor oxacino 10 μg ≤ 12 13-16 ≥ 17
Enoxacino 10 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 (15) Aprovado pela FDA para S.
saprophyticus e S. epidermidis (não para S. aureus).
Grepa oxacino 5 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18
Espar oxacino 5 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
Levo oxacino 5 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
(intravenoso)
Nitrofurantoínas
Nitrofurantoína 300 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Lincosamidas
Clindamicina 2 μg ≤ 14 15-20 ≥ 21 (16) Isolados de S. aureus e
Staphylococcus spp. macrolídeorresistentes podem
ter resistência constitutiva ou
induzida à clindamicina.
Inibidores da via do folato
Sulfametoxazol- 1,25/23,75 ≤ 10 11-15 ≥ 16
trimetoprima μg
Sulfonamidas 250 μg ou ≤ 12 13-16 ≥ 17 (17) O disco de sul soxazol pode
300 μg ser usado como representante
de algumas das preparações de
sulfonamidas correntemente
disponíveis.
Trimetoprima 5 μg ≤ 10 11-15 ≥ 16
Fenicóis
Cloranfenicol 30 μg ≤ 12 13-17 ≥ 18 (18) Não utilizado rotineiramente
em isolados do sistema
urinário.
Ansamicinas
Rifampicina 5 μg ≤ 16 17-19 ≥ 20 (19) A rifampicina não deverá ser
usada sozinha para
quimioterapia.
Estreptograminas
Quinupristina- 15 μg ≤ 15 16-18 ≥ 19
dalfopristina
Oxazolidinonas
Linezolida 30 μg – – ≥ 21
Condições do teste: meio, ágar Mueller-Hinton; inóculo, método de espalhamento em placa ou suspensão direta da
colônia equivalente a 0,5 do padrão de MacFarland; incubação: 33 a 35°C (não exceder 35°C); ar ambiente; por 16 a 18
h, ou 24 h para oxacilina, meticilina, nafcilina e vancomicina. Fonte: Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), ISO 20776-1:2006.
Quadro 7.5 Padrões interpretativos do diâmetro da zona (halo) de inibição para Enterococcus spp.
Agente Conteúdo Diâmetro do halo (mm) Comentários
antimicrobiano (disco)
Resistente Intermediário Sensível
Penicilinas
Penicilina ou 10 ≤ 14 – ≥ 15 (1) Ampicilina é a classe
Ampicilina unidades representativa para ampicilina e
≤ 16 – ≥ 17
amoxicilina. Resultados para
10 μg
ampicilina podem predizer
suscetibilidade para
amoxicilina-ácido clavulânico,
ampicilina-sulbactam,
piperacilina e piperacilina-
tazobactam entre os
enterococos não produtores de
betalactamases.
(2) A suscetibilidade à penicilina
pode ser usada para predizer a
suscetibilidade a ampicilina,
ampicilina-sulbactam,
amoxicilina-ácido clavulânico,
piperacilina e piperacilina-
tazobactam para os enterococos
não produtores de
betalactamases.
(3) Em virtude de a resistência a
ampicilina ou penicilina
promovida pela produção de
betalactamase, entre os
enterococos, não ser
prontamente detectada usando
rotineiramente o método de
discos ou de diluição, um teste
direto para betalactamases é
recomendado para isolados de
sangue e líquido cerebrospinal.
Um teste positivo para
betalactamase pode signi car
resistência à penicilina, bem
como às amino-, carboxi- e
ureidopenicilinas.
Glicopeptídeos
Vancomicina 30 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17 (4) Quando testar vancomicina
contra enterococos, as placas
deverão ser mantidas por 24 h e
examinadas usando-se uma
fonte de luz sobre a placa; a
presença de turvação,
sombreamento ou qualquer
crescimento dentro da zona de
inibição indica resistência.
Organismos com zonas
intermediárias deverão ser
testados pelo método CIM.
Teicoplanina 30 μg ≤ 10 11-13 ≥ 14
Lipopeptídeos
Daptomicina 30 μg – – ≥ 11
Macrolídeos
Eritromicina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19 (5) Não rotineiramente utilizados
em isolados do sistema urinário.
Tetraciclinas
Tetraciclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19 (6) Organismos suscetíveis à
tetraciclina são também
considerados suscetíveis a
doxiciclina e minociclina.
Entretanto, mesmo alguns
organismos intermediários ou
resistentes à tetraciclina podem
ser suscetíveis a doxiciclina ou
minociclina ou ambos.
Doxiciclina 30 μg ≤ 12 13-15 ≥ 16
Minociclina 30 μg ≤ 14 15-18 ≥ 19
Fluoroquinolonas
Cipro oxacino 5 μg ≤ 15 16-20 ≥ 21
Levo oxacino 5 μg ≤ 13 14-16 ≥ 17
Nor oxacino 10 μg ≤ 12 13-16 ≥ 17
Gati oxacino 5 μg ≤ 14 15-17 ≥ 18 (7) Esta in exão aplica-se somente
para isolados do sistema
urinário.
Nitrofurantoínas
Nitrofurantoína 300 μg ≤ 14 15-16 ≥ 17
Ansamicinas
Rifampicina 5 μg ≤ 16 17-19 ≥ 20 (8) Rifampicina não deverá ser
usada sozinha para
quimioterapia.